標(biāo)準(zhǔn)溶液在配制、標(biāo)定、保存和使用過程中，要認(rèn)真按規(guī)定進(jìn)行各環(huán)節(jié)的工作，才能保證溶液濃度的準(zhǔn)確性，以保證實(shí)驗(yàn)結(jié)果的真實(shí)、準(zhǔn)確。
所有從別處轉(zhuǎn)來的或是自己所建的細(xì)胞系都要早期留有的充足的凍存儲(chǔ)備，一旦懷疑發(fā)生交叉污染，可做細(xì)胞遺傳學(xué)方面的鑒定，如發(fā)現(xiàn)原有的細(xì)胞遺傳物發(fā)生改變，可以復(fù)蘇早期凍存的細(xì)胞使用。重要細(xì)胞系（株）的傳代工作應(yīng)由兩人獨(dú)立進(jìn)行。
提取純化后的RNA應(yīng)盡快保存起來，以防止其降解。常見的保存方法是在-80的低溫冰箱中凍存RNA或使用RNA保存液進(jìn)行長期保存。
分枝桿菌的植物細(xì)胞內(nèi)帶有很多的脂類，包圍著在肽聚糖的外邊，因此分枝桿菌一般不容易上色，要?dú)v經(jīng)加溫和增加上色時(shí)間來促進(jìn)其上色。但分枝桿菌中的分枝菌酸與染劑融合后，就難以被酸堿性脫色劑褪色，故稱抗酸染色。
抗原的選擇可以是天然蛋白、重組可溶蛋白、重組變性蛋白和多肽，抗原質(zhì)量越高，最終制備高質(zhì)量抗體的幾率也會(huì)越大！ 目前抗體制備常采用重組蛋白或多肽作為抗原。
融合的方法很多，常用的有轉(zhuǎn)動(dòng)法和離心法。融合時(shí)脾細(xì)胞和骨髓瘤細(xì)胞的比例為1:1至10:1不等。3:1或5:1最為常用。
雙抗體夾心法適用于測定二價(jià)或二價(jià)以上的大分子抗原，但不適用于測定半抗原及小分子單價(jià)抗原，因其不能形成兩位點(diǎn)夾心。
培養(yǎng)基與菌種分離是從含有多種微生物的樣品中獲得純種微生物的操作技術(shù)。菌種分離主要在培養(yǎng)皿上進(jìn)行，常用的方法是稀釋法和劃線法。使用這兩種方法的目的是是微生物的一個(gè)個(gè)體通過繁殖，在固體培養(yǎng)基上長出肉眼能見的群體，根據(jù)培養(yǎng)特征，用接種針調(diào)取所需菌種并在顯微鏡下檢查，證明為單一形狀的菌體。常用的培養(yǎng)基是選擇培養(yǎng)基。
關(guān)注微信下單
