一、實(shí)驗(yàn)步驟:
(1)樣品制備:對于貼壁生長細(xì)胞,胰酶消化,調(diào)整細(xì)胞濃度約1×105/ml,滴加于蓋玻片上(置于6孔板中),培養(yǎng)相應(yīng)時(shí)間后,取出細(xì)胞爬片,用PBS 洗滌3次。
(2)樣品固定:95%乙醇固定20min,PBS洗滌2次,每次1min。
(3)染核:蘇木素染液染色2-3min,自來水洗滌。
(4)分色:鏡下觀察,若細(xì)胞核染色過深,用1%鹽酸酒精溶液分色數(shù)秒,自來水洗滌。
(5)染胞質(zhì):浸入伊紅染液染色1min,自來水洗滌。
(6)吹干或自然晾干細(xì)胞 爬片后,中性樹膠封片。
若細(xì)胞用4%多聚甲醛固定,則染色時(shí)間相應(yīng)延長,蘇木素染色12-15min,伊紅5min即可。
二、注意事項(xiàng):
1、染色時(shí)調(diào)節(jié)pH值很重要。如果組織塊在福爾馬林中固定時(shí)間長,組織酸化而影響細(xì)胞核著色。因此,要在自來水中沖洗時(shí)間長一些或在飽和碳酸鋰水溶液中處理10-30min,這樣可以使細(xì)胞核著色較深。染伊紅時(shí)胞漿著色不佳,可在伊紅溶液中滴加1-2滴冰醋酸。
2、切片染蘇木精后,分色這一步是關(guān)鍵,應(yīng)在顯微鏡下控制進(jìn)行,一般以細(xì)胞核染色清楚(晰)而細(xì)胞質(zhì)基本無色為佳。如果過分延長分色時(shí)間將導(dǎo)致染色太淺,應(yīng)重新染色后再行分色。
3、切片經(jīng)酒精脫水后,入二甲苯時(shí)可出現(xiàn)白色不透明狀態(tài),此為脫水不徹底,應(yīng)將切片退回?zé)o水酒精,更換酒精、二甲苯,以求徹底脫水與透明。
4、在染色過程中不要讓切片干燥,以免切片收縮、變形,影響神經(jīng)元形態(tài)。
5、切片從二甲苯取出或進(jìn)入二甲苯前,切片周邊均應(yīng)擦干凈或吸干多余水分。
6、最后封固時(shí),要用中性樹脂,防止日后褪色,蓋片要選大于組織塊的面積,如漏出一部分不久將會(huì)褪色,所用樹脂濃度要適當(dāng),樹脂封固時(shí)不能有氣泡。